СПЕКТР БЕЛКОВ, ПРОДУЦИРУЕМЫЙ ДЕРМАЛЬНЫМИ ФИБРОБЛАСТАМИ, У ДЕТЕЙ С БОЛЕЗНЬЮ КРОНА

Представлены данные по исследованию продукции дермальными фибробластами спектра протеинов у условно здоровых детей и детей с болезнью Крона в ходе последовательных пассажей. Цель исследования: установить особенности белкового спектра супернатантов, полученных при многократном культивировании фибробластов в норме и при патологии. Пациенты и методы: объектом исследования были супернатанты 4 культур фибробластов, полученные из биоптатов кожи двух условно здоровых детей и двух детей с болезнью Крона в возрасте 14–17 лет. Оценку белкового спектра проводили на времяпролетном спектрометре Bruker Autoflex (США) методом масс-спектрометрического анализа MALDI-TOF, фенотипирование — на проточном цитофлуориметре FACS Cantu II (США). Результаты: методами статистического анализа в протеограммах были выделены 5 кластеров распределения протеинов по молекулярной массе — от 0,8 до 3,3 кДа, от 3,3 до 6,00 кДа, от 6 до 11 кДа, от 11 до 16,6 кДа и более 16,6 кДа. При сравнении протеограмм больных и условно здоровых детей обнаружены различия. Выводы: установлены определенные особенности протеомного профиля, характерные для супернатантов культур фибробластов детей с болезнью Крона. Зарегистрированные показатели протеомного спектра секреторных компонентов культур фибробластов могут быть использованы для характеристики их активности на различных сроках культивирования.

1. Belousova E. A. Yazvenniy kolit i bolezn Krona [Ulcerative colitis and Crohn's disease]. Tver, Triada Publ., 2002. 128 p.

2. Bozo I.Ya. Deev R. V., Pinaev G. P. “Fibroblast” — spetsializirovannaya kletka ili funktsionalnoye sostoyaniye kletok mezenkhimalnogo proiskhozhdeniya [Fibroblast: A specialized cell or functional state of cells of mesenchymal origin]. Tsitologiya — Cytology. 2010; 2 (52): 99–109.

3. Mayanskaya I. V., Potekhin P. P., Ashkinazi V.I, Tolkacheva N. I., Goganova A.Yu. Intestinalnye stromalnye kletki: identifikatsiya, proiskhozhdeniye, funktsii [Intestinal stromal cells: Identification, origin and function]. RMZh [RMJ]. 2013; 2: 34–39.

4. Johnson L. A., Rodansky E. S., Sauder K. L., Horowitz J. C., Mih J. D., Tschumperlin D. J., Higgins P. D. Matrix stiffness corresponding to strictured bowel induces a fibrogenic response in human colonic fibroblasts. Inflamm. Bowel Dis. 2013; 19 (5): 891–903.

5. Zorina A., Zorin V., Chekrasov V. Raznoobraziye fenotipov i fiziologicheskikh funktsy, rol v starenii kozhi [A variety of phenotypes and physiological functions, and their role in skin aging]. Esteticheskaya meditsina — Aesthetic Medicine. 2010; XI (1): 15–31.

6. Zhukovskiy N. S. Ispolzovaniye proteomnykh podkhodov dlya izucheniya gemopoeticheskikh stvolovykh kletok i atero skleroticheskikh porazheny aorty [Using proteomic approaches for the study of hematopoietic stem cells and atherosclerotic lesions of the aorta]. Avtoreferat-dissertatsiya doktora meditsinskikh nauk [Autoabstractthesis of Doctor of Medical Science]. Moscow, 2012. 36 p.

7. Archakov A. M. Postgenomnye tekhnologii i molekulyarnaya meditsina [Post-genomic technologies and molecular medicine]. Vestnik RAN — Herald of the RAS. 2004; 74 (5): 23–28.

8. Subramanian J., Simon R. Gene expression-based prognostic signatures in lung cancer: ready for clinical use? J. Natl. Cancer Inst. 2010; 7 (102): 464–474.

9. Zimmer J. S., Monroe M. E., Qian W. J., Smith R. D. Advances in proteomics data analysis and display using an accurate mass and time tag approach. Mass Spectrom. Rev. 2006; 25 (3): 50–82.

10. Yurkovetsky Z., Skates S., Lomakin A., Nolen B., Pulsipher T., Modugno F., Marks J., Godwin A., Gorelik E., Jacobs I., Menon U., Lu K., Badgwell D., Bast R. C., Jr, Lokshin A. E. Development of a multimarker assay for early detection of ovarian cancer. J. Clin. Oncol. 2010; 1 (28, 13): 2159–2166.

11. Yamashita H., Ueda Y., Kawaguchi H., Suzuki A., Takahashi Y., Kaneko H., Kano T., Mimori A. Systemic lupus erythematosus complicated by Crohn's disease: a case report and literature review. BMC Gastroenterol. 2012; 5 (12): 174.